Большие нанодиски имитируют проникновение вируса в клетки-хозяева

Большие нанодиски имитируют проникновение вируса в клетки-хозяева

Мембранные белки активно участвуют в различных клеточных процессах, таких как передача сигналов, транслокация мембран, клеточная адгезия и многие другие, и поэтому представляют большой интерес в области разработки лекарств.

Структура соответствующих мембранных белков иногда имитируется во время исследований с использованием детергентных мицелл, которые способны захватывать и извлекать мембранный белок в липидном слое, что в некоторой степени имитирует условия, обнаруженные в липидном бислое клеточной мембраны.

Однако детергенты могут мешать связывающим взаимодействиям, которые в противном случае мог бы происходить в белке в их отсутствие, и могут влиять на третичную структуру белка.

Аналогичным образом, фосфолипидные липосомы и другие типы липидного бислоя были использованы для имитации естественных условий мембранных белков. Однако эти методы часто приводят к частицам неоднородного размера, которые несовместимы со многими методами микроскопии.

Фосфолипидные нанодиски состоят из липидного бислоя, окруженного амфипатическими белками, которые загоняют структуру в форму диска, создавая среду, более характерную для окружающей среды, которая естественным образом обнаруживается в клеточной мембране.

К сожалению, как и в случае с липосомами, нанодиски часто страдают от неоднородного размера и белковой нагрузки, особенно когда они сделаны в больших размерах, более 16 нм в диаметре.

В статье, недавно загруженной в журнал Границы биотехнологии Падманабхой Дасом и другими . (12 июня th 2020) описывается метод производства значительно больших однородных нанодисков диаметром до 90 нм, а также исследуются преимущества и применения таких нанодисков: лучшее воспроизведение фактической кривизны и симметрии мембраны. реальной клеточной мембраны и позволяет одновременно загружать гораздо более крупные или множественные мембранные белки.

Нанодиски как имитаторы клеточных мембран

Нанодиски меньшего размера были получены путем укорачивания или удлинения структурных белков амфипатической мембраны, которые окружают липидный бислой. Группа использовала свернутую ДНК в бочкообразной структуре для создания нанодисков большего размера, которые впоследствии были заполнены липидами и интересующим мембранным белком.

<img alt=" Обзор доступных в настоящее время методов производства стабильных и однородных больших нанодисков. (A) Стратегия рассылки MSP на основе сортировки. Сортаза расщепляет Gly и Thr мотива LPXTG на C-конце MSP и катализирует образование амидной связи с N-концом Gly, в результате чего образуется кольцевой MSP, который можно использовать для сборки нанодисков размером от 9 до 50 нм. (B) Стратегия на основе расщепления интеина для циркуляризации MSP in vivo с использованием расщепленного интеина Npu DnaE. В результате слияния MSP получаются нанодиски размером до 26 нм. (C) Схема протокола нанодисков, заключенных в ДНК. Небольшие нанодиски, функционализированные олигонуклеотидами, связываются с определенными участками ДНК оригами, в результате чего образуется небольшой украшенный нанодисками цилиндр. Добавление детергентов и липидов с последующим удалением детергентов с помощью диализа приводит к воссозданию больших нанодисков внутри цилиндра ДНК. "Height =" 913 "src =" https://d2jx2rerrg6sh3.cloudfront.net/image-handler/picture/2021 /7/fbioe-08-00539-g001.jpg "title =" Обзор доступных в настоящее время методов производства стабильных и однородных больших нанодисков. (A) Стратегия рассылки MSP на основе сортировки. Сортаза расщепляет Gly и Thr мотива LPXTG на C-конце MSP и катализирует образование амидной связи с N-концом Gly, в результате чего образуется кольцевой MSP, который можно использовать для сборки нанодисков размером от 9 до 50 нм. (B) Стратегия на основе расщепления интеина для циркуляризации MSP in vivo с использованием расщепленного интеина Npu DnaE. Слияние MSP приводит к образованию нанодисков размером до 26 нм. (C) Схема протокола нанодисков, заключенных в ДНК. Небольшие нанодиски, функционализированные олигонуклеотидами, связываются с определенными участками ДНК оригами, в результате чего образуется небольшой украшенный нанодисками бочонок. Добавление детергентов и липидов с последующим удалением детергентов с помощью диализа приводит к воссозданию больших нанодисков внутри цилиндра ДНК. "Width =" 1084 "/>

Обзор доступных в настоящее время методов производства стабильных и однородных больших нанодисков. (A) Стратегия рассылки MSP на основе сортировки. Сортаза расщепляет Gly и Thr мотива LPXTG на С-конце MSP и катализирует образование амидной связи с N-концом Gly, в результате чего образуется кольцевой MSP, который можно использовать для сборки нанодисков размером от 9 до 50 нм. (B) Стратегия на основе расщепления интеина для циркуляризации MSP in vivo с использованием расщепленного интеина Npu DnaE. В результате слияния MSP получаются нанодиски размером до 26 нм. (C) Схема протокола нанодисков, заключенных в ДНК. Небольшие нанодиски, функционализированные олигонуклеотидами, связываются с определенными участками ДНК оригами, в результате чего образуется небольшой украшенный нанодисками бочонок. Добавление детергентов и липидов с последующим удалением детергентов с помощью диализа приводит к воссозданию больших нанодисков внутри цилиндра ДНК.

Путь проникновения вируса в клетку варьируется в зависимости от конкретного вируса или клетки-хозяина и является предметом тщательного изучения исторически, особенно в последнее время с наступлением пандемии COVID-19.

Криоэлектронная микроскопия позволяет визуализировать процесс и ранее использовалась в комбинации с липосомами для описания того, как, например, частицы риновируса 2 человека пересекают клеточную мембрану. Однако проблемы, связанные с однородностью размеров и нагрузкой, ограничивают актуальность этой платформы.

Большие нанодиски, которые могут поддерживать большие белковые комплексы, лучше имитируют естественную клеточную мембрану и больше подходят для крио-электромагнитных исследований, потенциально обеспечивая идеальную структуру, на которой могут быть выполнены эти исследования.

Нанодиски, приготовленные таким образом, также имеют то преимущество, что они потенциально могут производиться асимметрично, с разными «внутренними» и «внешними» мембранами, что в естественных условиях наблюдается внутри плазматической мембраны эукариот, где сфингомиелин и фосфатидилхолин активно разделяются на внешнюю мембрану и фосфатидилэтаноламин, фосфатидилсерин и фосфатидилинозитол внутрь.

В заключение, ДНК-оригами позволило создать большие нанодиски, которые сильно имитируют липидный бислой, обнаруженный в клетках, и способны поддерживать большое или большое количество белковых комплексов в in situ -подобной среде.

<img alt=" Крио-ЭМ изображение полевого вида полиовируса, взаимодействующего с 50 нм cND, содержащим рецептор CD155. (B) Крио-ЭМ изображения отдельных вирусных частиц, привязанных к нанодиску, содержащему CD155. (C) ТЕМ-изображения с негативным окрашиванием полиовируса, взаимодействующего с 60 нм DCND, содержащим рецептор CD155. (D) ПЭМ-изображения отдельных вирусных частиц, взаимодействующих с DCND, содержащим CD155. Некоторые нанодиски частично высвободились из каркасов ДНК после связывания вируса. На изображениях показано изгибание бислоя и создание поры в нанодиске вирусом полиомиелита. Мультяшное изображение нанодиска, частично высвобождающегося из каркаса ДНК после связывания с вирусом (справа). Этот рисунок адаптирован и используется с разрешения ссылок (Nasr et al., 2017; Zhao et al., 2018). "Height =" 816 "src =" https://d2jx2rerrg6sh3.cloudfront.net/image-handler/picture /2021/7/fbioe-08-00539-g002.jpg "title =" Крио-ЭМ изображение полевого вида полиовируса, взаимодействующего с 50 нм cND, содержащим рецептор CD155. (B) Крио-ЭМ изображения отдельных вирусных частиц, привязанных к нанодиску, содержащему CD155. (C) ТЕМ-изображения с негативным окрашиванием полиовируса, взаимодействующего с 60 нм DCND, содержащим рецептор CD155. (D) ПЭМ-изображения отдельных вирусных частиц, взаимодействующих с DCND, содержащим CD155. Некоторые нанодиски частично высвободились из каркасов ДНК после связывания вируса. На изображениях показано изгибание бислоя и создание поры в нанодиске вирусом полиомиелита. Мультяшное изображение нанодиска, частично высвобождающегося из каркаса ДНК после связывания с вирусом (справа). Этот рисунок адаптирован и используется с разрешения ссылок (Nasr et al., 2017; Zhao et al., 2018). "Width =" 1084 "/>

Крио-ЭМ изображение полевого вида полиовируса, взаимодействующего с 50 нм cND, содержащим рецептор CD155. (B) Крио-ЭМ изображения отдельных вирусных частиц, привязанных к нанодиску, содержащему CD155. (C) ТЕМ-изображения с негативным окрашиванием полиовируса, взаимодействующего с 60 нм DCND, содержащим рецептор CD155. (D) ПЭМ-изображения отдельных вирусных частиц, взаимодействующих с DCND, содержащим CD155. Некоторые нанодиски частично высвободились из каркасов ДНК после связывания вируса. На изображениях показано изгибание бислоя и создание поры в нанодиске вирусом полиомиелита. Мультяшное изображение нанодиска, частично высвобождающегося из каркаса ДНК после связывания с вирусом (справа). Этот рисунок адаптирован и используется с разрешения ссылок (Nasr et al., 2017; Zhao et al., 2018).

Эта технология имеет широкий спектр потенциальных применений в биологии, особенно в отношении изучения метода проникновения в клетки, используемого вирусом, где механизм проникновения через мембрану, стадии разборки вирусных частиц и любые связанные с ними конформационные изменения или вовлечение поверхностных рецепторов. может быть установлено.

Ссылка в журнале:

  • Падманабха Дас Кришна М., Ши Уильям М., Вагнер Герхард, Наср Махмуд Л., Большие нанодиски: потенциальные изменения в правилах структурной биологии мембранных белковых комплексов и проникновения вирусов, рубежи в биоинженерии и биотехнологии, DOI = 10.3389 / fbioe.2020.00539, https://www.frontiersin.org/article/10.3389/fbioe.2020.00539

Source link